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免疫荧光(IF)实验常见问题有哪些?解决方案有什么?

 更新时间:2023-09-01    点击量:990

免疫荧光技术是根据抗原抗体反应的原理,先将已知的抗原或抗体标记上荧光素,制成荧光抗体,再用这种荧光抗体(或抗原)作为探针检测组织或细胞内的相应抗原(或抗体)。那么你知道在免疫荧光(IF)实验中会遇到那些问题以及这些问题的解决方法吗?让我们一起来看看吧!

问题一:目标蛋白荧光很弱,导致组间差异不显著,导致假阴性结果

解决方案:出现这种情况后,首先检查抗体是否正确,是否适用于预处理的组织。有些抗体只适用于冰冻切片,但如果应用于石蜡切片,则会出现弱标记或无标记现象。然后通过文献了解目的蛋白在组织或细胞中的表达丰度。此外,如果抗体修复不足,抗原表位未完quan暴露,也会出现弱标记。例如,虽然大多数抗体在酸性环境中修复,但也有少数抗体需要在碱性环境中修复。建议查看抗体说明书,严格按照其修复条件进行实验。

问题二:目标蛋白的荧光过强,甚至形成非特异性的标记,一些背景染色可能被误认为阳性区域,造成假阳性结果

解决方法适当降低一抗或者二抗的浓度,增加漂洗时间,一般能够有所改善

问题三:DAPI 染细胞核时,加入的试剂太多,造成高背景染色

解决方法滴加的 DAPI 不要太多,只需覆盖上薄薄的一层即可。

问题四:组织切片预处理不当或采用石蜡切片,导致高背景染色

解决方案:如果组织切片,尤其是石蜡切片脱蜡环节不彻di,也会造成区域性的非特异性标记。建议脱蜡一定要彻di,脱蜡前充分烤片也可以帮助脱蜡。实验过程中,玻片干燥了,同样会造成高背景或大面积的非特异性标记。漂洗环节和抗体孵育环节最容易出现干片现象,尤其是大批量实验时,一定要注意。使用免疫组化专用笔画个圈,可以有效改善。

问题五:采集图像过程不当,导致原始图像不佳,直接影响后续半定量分析

解决方案:采集图像时不要对每一张图像都加上标尺,否则后期采用 Image J或者 IPP 进行分析时,这些标尺会对结果造成影响。采集图像时,速度要快。如果激发光很长时间对准目标区域,此区域内的荧光衰减会极快因此,目标区域较小时,一定要尽量快速采集,减少人为实验误差。

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