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022-66387942感受态细胞转化效率高达 108 cfu/µg,具链霉素抗性,其转化后单菌落的生长数多,生长速度比 DH5α 略快,相同培养时间内生长的菌斑略大于DH5α。适用于高效的 DNA 克隆和质粒扩增。能保证高拷贝质粒的稳定复制。
操作步骤:
使用前请先在漂洗液PW中加入无水乙醇,加入体积请参照瓶上的标签。
1. 柱平衡步骤:向吸附柱CP3中(吸附柱放入收集管中)加入500μl的平衡液BL,12,000 rpm(~13,400×g)离心1 min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。(使用当天处理过的柱子)
2. 取1-5 ml过夜培养的菌液加入离心管中,12,000rpm (~13,400×g)离心1 min,尽量吸除上清(菌液较多时可以通过几次离心将菌体沉淀收集到一个离心管中)。
3. 向留有菌体沉淀的离心管中加入250μI溶液P1(请先检查是否已加入RNase A),使用移液器或涡旋振荡器彻di悬浮细菌细胞沉淀。
注意:如果有未彻di混匀的菌块,会影响裂解,导致提取量和纯度偏低。
4. 向离心管中加入250μl溶液P2,温和地上下翻转6-8次使菌体充分裂解。
注意:温和地混合,不要剧烈震荡,以免打断基因组DNA,造成提取的质粒中混有基因组DNA片断。此时菌液应变得清亮粘稠,所用时间不应超过5min,以免质粒受到破坏。如果未变得清亮,可能由于菌体过多,裂解不彻di,应减少菌体量。
5. 向离心管中加入350μl溶液P3,立即温和地上下翻转6-8次,充分混匀,此时会出现白色絮状沉淀。12,000rpm(~13,400×g)离心10min,用移液器小心地将上清转移到过滤柱CS(过滤柱放入收集管中),注意尽量不要吸出沉淀。
注意:P3加入后应立即混合,避免产生局部沉淀。如果上清中还有微小白色沉淀,可再次离心后取上清。
6. 12,000 rpm(~13,400×g)离心2 min,小心地将离心后收集管中得到的溶液转移到吸附柱CP3中(吸附柱放入收集管中),(如果过滤柱中有残余的液体说明步骤5吸取的上清中杂质过多,可以延长离心的时间;如果离心后收集管底部有少量的沉淀,尽量的吸取上清)。
7. 12.000 rpm (~13,400×g)离心30-60 sec,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CP3放入收集管中。
8.向吸附柱CP3中加入500μl去蛋白液PD,12,000rpm (~13.400×g)离心30-60 sec,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CP3放入收集管中。
9. 向吸附柱CP3中加入600μl漂洗液PW(请先检查是否已加入无水乙醇),12,000 rpm(~13,400×g)离心30-60 sec,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CP3放入收集管中。
10.重复操作步骤9。
11.将吸附柱CP3放入收集管中,12,000 rpm(~13,400×g)离心2 min,目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除。
注意:漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切、PCR等)实验。为确保下游实验不受残留乙醇的影响,建议将吸附柱CP3开盖,置于室温放置数分钟,以彻di晾干吸附材料中残余的漂洗液。
12.将吸附柱CP3置于一个干净的离心管中,向吸附膜的中间部位悬空滴加50-100μI洗脱缓冲液TB,室温放2min,12,000rpm(~13,400×g)离心2min,将质粒溶液收集到离心管中。
注意:为了增加质粒的回收效率,可将得到的溶液重新加入离心吸附柱中,重复步骤12。洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。若用ddH20做洗脱液,应保证其pH值在7.0-8.5范围内,pH值低于7.0会降低洗脱效率。洗脱缓冲液体积不应少于50μl,体积过小影响回收效率。且DNA产物应保存在-20°C,以防DNA降解。
产品选购:
货号 | 产品名称 | 规格 |
CB104-01 | 感受态细胞 | 10×100 μl |