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022-66387942一、工作原理
RNA酶保护法(RNase Protection Assay,RPA,以下简称RPA),是近十年发展起来的一种全新的mRNA定量分析方法。
基本原理:将标记的特异RNA探针(32P或生物素)与待测的RNA样品液相杂交,标记的特异RNA探针按碱基互补的原则与目的基因特异性结合,形成双链RNA;未结合的单链RNA经RNA酶A或RNA酶T1消化形成寡核糖核酸,而待测目的基因与特异RNA探针结合后形成双链RNA,免受RNA酶的消化,故该方法命名为RNA酶保护实验。
二、RPA法优点
与Northern blot和RT-PCR比较,RPA有以下几个优点:
1. 检测灵敏度比Northern杂交高。
由于Northern杂交步骤中转膜和洗膜都将造成样品和探针的损失,使灵敏度下降,而RPA将所有杂交体系进行电泳,故损失小,提高了灵敏度。
2. 由于PCR扩增过程中效率不均一和反应“平台"问题,基于PCR产物量进行分析所得数据的可靠性将下降,而RPA没有扩增过程,因此,分析的数据真实性较高。
3.由于与反义RNA探针杂交的样品RNA仅为该RNA分子的部分片段,因此,部分降解的RNA样品仍可进行分析。
4.步骤较少,耗时短。与Northern杂交相比,省去了转膜和洗膜的过程。
5.RNA-RNA杂交体稳定性高,无探针自身复性问题,无须封闭。
6.一个杂交体系中可同时进行多个探针杂交,无竞争性问题。
7. 检测分子长度可以任意设置,灵活性大。
三、RPA法缺点
RNA酶保护试验方法的主要缺点包括RNA探针的制备过程复杂、核酸酶消化时酶量的控制困难、需要使用放射性同位素。
RNA探针的制备过程复杂:该方法的前提是必须首先将研究的基因克隆到一个载体中,并清楚插入片段的方向。载体插入片段两侧需要有T3、T7或SP6的启动子位点。载体需要使用合适的内切酶线性化,并选择正确的体外转录试剂盒,转录出要研究的mRNA的互补链,再进行纯化。这一过程相对繁琐且技术要求较高。
核酸酶消化时酶量的控制困难:在核酸酶消化过程中,酶量的控制是一个挑战,因为酶量难以精确控制,容易导致消化过头,使得X片上没有任何显示。这表明实验操作对酶量的控制要求非常高,否则会影响实验结果的准确性。
需要使用放射性同位素:该方法需要使用放射性同位素进行标记,虽然这种方法防护相对容易,但由于使用了放射性物质,需要进行特殊的处理和防护措施。此外,该方法还需要进行垂直板状PAGE,并且涉及到大量的放射性物质,如电泳缓冲液、电泳槽、玻璃板、漂洗固定液及托盘等,这些都增加了实验的复杂性和安全性考虑。如果非同位素的标记和检测能够达到相同的灵敏度和成本效益,这将是一个改进的方向。
综上所述,虽然RNA酶保护试验方法在定量分析RNA方面具有高灵敏度和高特异性等优点,但其操作复杂、对实验条件要求高以及使用放射性同位素的限制是其主要的缺点。
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